Cong, L. et al. Ingénierie du génome multiplex à l’aide des systèmes CRISPR/Cas. Science 339819-823 (2013).
Jinek, M. et al. Une endonucléase ADN guidée par double ARN programmable dans l’immunité bactérienne adaptative. Science 337816-821 (2012).
Feu, A. et al. Interférence génétique puissante et spécifique par l’ARN double brin dans Caenorhabditis elegans. Nature 391806-811 (1998).
Seeman, NC & Sleiman, nanotechnologie de l’ADN HF. Nuit. Tour. Maître. 31742-1749 (2017).
Rothemund, PWK Plier l’ADN pour créer des formes et des motifs à l’échelle nanométrique. Nature 440297-302 (2006).
Benenson, Y., Adar, R., Paz-Elizur, T., Livneh, Z. et Shapiro, E. La molécule d’ADN fournit à une machine informatique à la fois des données et du carburant. Proc. Natl Acad. Savoir Etats-Unis 1002191-2196 (2003).
Li, Y. et coll. Assemblage contrôlé d’ADN de type dendrimère. Nuit. Maître. 338-42 (2004).
Ellington, AD & Szostak, JW Sélection in vitro de molécules d’ARN qui se lient à des ligands spécifiques. Nature 346818-822 (1990).
Tuerk, C. & Gold, L. Evolution systématique des ligands par enrichissement exponentiel : ligands ARN de l’ADN polymérase du bactériophage T4. Science 249505-510 (1990).
Tasset, D., Kubik, MF et Steiner, W. Inhibiteurs oligonucléotidiques de la thrombine humaine qui se lient à des épitopes distincts. J. Mol. Biol. 272688-698 (1997).
Boshtam, M., Asgary, S., Kouhpayeh, S., Shariati, L. & Khanahmad, H. Aptamères contre les cytokines pro- et anti-inflammatoires : une revue. Inflammation 40340-349 (2017).
Famulok, M. & Mayer, G. Aptamers et SELEX en chimie et biologie. Chimique. Biol. 211055-1058 (2014).
Rusconi, CP et coll. Aptamères d’ARN comme antagonistes réversibles du facteur de coagulation IXa. Nature 41990-94 (2002).
Farokhzad, OC et al. Bioconjugués nanoparticules-aptamères ciblés pour la chimiothérapie anticancéreuse vivant. Proc. Natl Acad. Savoir Etats-Unis 1036315-6320 (2006).
Liu, J. & Lu, Y. Détection colorimétrique rapide de l’adénosine et de la cocaïne basée sur une conception générale de capteur impliquant des aptamères et des nanoparticules. Angew. Chimique. 4590-94 (2006).
Zhao, W. et al. Capteurs de surface cellulaire pour sonder en temps réel les environnements cellulaires. Nat. Nanotechnologie. 6524-531 (2011).
McNamara, JA et coll. Livraison spécifique au type cellulaire de siARN avec des chimères aptamère-siARN. Nat. Biotechnologie. 241005-1015 (2006).
Gotrik, MR, Feagin, TA, Csordas, AT, Nakamoto, M. & Soh, HT Avancées dans les technologies de découverte d’aptamères. Acc. Chimique. Rés. 491903-1910 (2016).
Vant-Hull, BP, Payano-Baez, A., Davis, RH & Gold, L. Les mathématiques de SELEX contre des cibles complexes. J. Mol. Biol. 278579-597 (1998).
Djordjevic, M. Expériences SELEX : nouvelles perspectives, applications et analyse de données pour déduire des voies de régulation. Biomol. Fra 24179-189 (2007).
Mendonsa, SD & Bowser, MT Sélection in vitro d’aptamères ayant une affinité pour le neuropeptide y par électrophorèse capillaire. Confiture. Chimique. Soc. 1279382-9383 (2005).
Hoon, S., Zhou, B., Janda, KD, Brenner, S. & Scolnick, J. Sélection d’aptamères par séquençage à haut débit et analyse informatique. BioTechniques 51413-416 (2011).
Lou, X. et coll. Sélection micromagnétique d’aptamères dans des canaux microfluidiques. PNAS 1062989-2994 (2009).
Kim, J. et al. Isolation microfluidique intégrée d’aptamères par manipulation électrophorétique d’oligonucléotides. Sci. représentant 626139 (2016).
Wilson, B. & Soh, HT Réévaluation des idées reçues sur les tests de liaison. Tendances Biochimie. Sci. 45639-649 (2020).
Sun, Y., Gombotz, WR & Hoffman, A. Synthèse et caractérisation de surfaces polymères non salissantes : I. Greffage par rayonnement de méthacrylate d’hydroxyéthyle et de méthacrylate de polyéthylène glycol sur un film silastique. J. Bioact. Compat. Polyme. 1316-334 (1986).
Ma, H., Hyun, J., Stiller, P. et Chilkoti, A. Brosses en polymère fonctionnalisé par oligo (éthylène glycol) « non encrassantes », synthétisées par polymérisation radicalaire par transfert d’atomes initiée en surface. Av. Maître. 16338-341 (2004).
Sanchez-Cano, C. & Carril, M. Développements récents dans la conception de revêtements non biosalissures pour nanoparticules et surfaces. Int. J. Mol. Sci. 211007 (2020).
MacDonald, J., Houghton, P., Xiang, D., Duan, W. et Shigdar, S. La troncature et la mutation d’un aptamère du récepteur de la transferrine améliorent l’affinité de liaison. Acide Nucléique Ther. 26348-354 (2016).
Le, TT, Chumphukam, O. & Cass, A. Détermination de la séquence minimale pour la liaison d’un aptamère. Une comparaison des méthodes de troncature et d’inhibition de l’hybridation. RSC Adv. 447227-47233 (2014).
Bock, LC, Griffin, LL, Latham, J., Vermaas, E. & Toole, JM Sélection de molécules d’ADN simple brin qui se lient et inhibent la thrombine humaine. Nature 355564-566 (1992).
Tokmakov, AA, Kurotani, A. & Sato, K. Protéine pI et localisation intracellulaire. Devant. Mol. Biosci. 8775736 (2021).
Ma, X., Balasubramanian, G. & Shrotriya, P. Liaison/déliaison contrôlée par un stimulus électrique du complexe thrombine-aptamère humain. Sci. représentant 637449 (2016).
Jiang, Z., You, L., Dou, W., Sun, T. & Xu, P. Effets d’un champ électrique sur la transition conformationnelle de la protéine : une étude de simulation de dynamique moléculaire. Polymères 11282 (2019).
Thormann, W., Zhang, C., Caslavska, J., Gebauer, P. & Mosher, RA Modélisation de l’impact de la force ionique sur le flux électroosmotique en électrophorèse capillaire avec des systèmes tampons uniformes et discontinus. Anal. Chimique. 70549-562 (1998).
Acinas, SG, Sarma-Rupavtarm, RB, Klepac-Ceraj, V. & Polz, MF Artefacts et biais de séquence induits par PCR : aperçus de la comparaison de deux bibliothèques de clones d’ARNr 16S construites à partir du même échantillon. Appl. Environ. Microbiol. 718966-8969 (2005).
Takahashi, M. et coll. L’analyse de séquençage à haut débit des bibliothèques d’ARN révèle les influences des méthodes initiales de bibliothèque et de PCR sur l’efficacité de SELEX. Sci. représentant 633697 (2016).
Cho, M. et al. Sélection quantitative d’aptamères d’ADN par sélection microfluidique et séquençage à haut débit. PNAS 10715373-15378 (2010).
Kramer, ST, Gruenke, PR, Alam, KK, Xu, D. & Burke, DH FASTAptameR 2.0 : un outil Web pour les sélections de séquences combinatoires. Mol. Là. Acides nucléiques 29862-870 (2022).
